小G蛋白,是具有GTP酶活性的一类蛋白,因其分子量只有20—30KD而得名。小G蛋白家族成员在细胞信号通路中具有分子开关的功能,并参与调控许多生物学过程。根据序列的同源性,小G蛋白被分成若干亚家族,例如Rho,Ras,Ran,Rab,Arf和Rad / Rem / Gem / Kir。
Rho 亚家族由 20 多个成员组成,目前研究得最多的是 Rac1、RhoA 和 Cdc42 蛋白。 Rho 蛋白主要通过一系列效应蛋白传递细胞信号,从而参与了广泛的细胞反应,包括细胞骨架重组、转录调控、细胞迁移、细胞转化和转移。
Rac1是一种分子量为21kDa的GTPase,由192个氨基酸编码组成。Rac1在多种细胞活动中起分子开关作用,包括细胞运动、发育、信号转导、细胞骨架组织、免疫反应、细胞周期、细胞间粘附、上皮分化,以及控制GLUT4转运以摄取葡萄糖。
RhoA 蛋白由 193 个氨基酸组成,分子量约为 22 kDa ,在调节肌动蛋白细胞骨架的动态组织(如聚合、肌动蛋白收缩性、应力纤维形成)以及调控依赖于动态肌动蛋白细胞骨架的细胞功能发挥着重要作用。此外,RhoA 还参与微管动力学的调控过程。
Cdc42是一个21.3 kDa的小GTPase蛋白,由191个氨基酸编码。Cdc42在多种依赖于肌动蛋白细胞骨架的细胞过程中发挥重要作用,如胞质分裂、吞噬、细胞迁移、形态发生、趋化、轴突引导、轴突成髓鞘、细胞内运输、基因转录、细胞周期调控和细胞命运决定等。
Rho 亚家族在肾脏功能中发挥着至关重要的作用1,尤其是在维持肾小管上皮细胞(tubular epithelial cells)、系膜细胞(mesangial cells)和足细胞(podocytes)等各种肾脏细胞类型方面(图 1)。足细胞是肾小球过滤屏障的基本组成部分,这种结构可以防止大蛋白和大分子过滤到尿液中,而这种肾小球屏障依赖于足细胞肌动蛋白细胞骨架的结构完整性2。因此,遗传性和特发性肾脏疾病都与 GTP 酶及其下游效应器的失调有关。最新研究揭示了Rho家族依赖性肾病及其潜在的分子机制,接下来小优就带大家一起来看看吧~
图1 Rho GTPases 与足细胞结构的示意图(Steichen et al. Small GTPases 2022.)
1. Rho GTPases 与糖尿病肾病
糖尿病肾病(diabetic nephropathies,DN)是一种由肾小球损伤引起的逐渐进展的肾脏疾病,与系膜细胞在高血糖影响下激活 RhoA 有关,最终导致细胞外基质过量生成(肾小球硬化)3。糖尿病肾病的发病机制是一个复杂的相互作用过程,包括高血糖、晚期糖基化终产物、氧化应激和多种细胞通路的激活。这些因素刺激Rho-GTPase活性,引发级联反应,最终导致肾损伤4-5。此外,Cdc42参与胰岛素合成、胰岛素颗粒动员和外分泌的调节6,而Rac1则影响系膜细胞的氧化损伤和凋亡活性7-8。
2. Rho GTPases和先天性肾病
Rho GTPases在先天性肾病中起着至关重要的作用,特别是对局灶性肾小球硬化症(FSGS)、常染色体显性多囊肾病(ADPKD)和 Alport 综合征等疾病的影响。
FSGS描述了在肾活检中观察到的一种组织学疾病模式,其表型由肾小球中的瘢痕组织定义,因此,它可以作为肾脏遭受各种损伤的诊断指标9。最早可以追溯到1925年,在患有肾病性蛋白尿的成人中记录,FSGS可以表现为特发性、遗传性、自身免疫性,或与肾小球质量减少相关的慢性肾病的反应(适应不良或其他),也可继发于药物或感染10。在遗传和特发性的FSGS中,编码 Rho GTPase 活性调节因子的基因发生突变。这些基因突变涉及GTPase激活蛋白(GAP) Rho-GAP 24 (ARHGAP24),其作为Rac1的GAP并控制RhoA-Rac1信号平衡9,11,12。此外,Rho GDP解离抑制剂α (ARHGDIA)、ITSN-1和ITSN-2的突变也与先天性肾病综合征有关13-15。值得注意的是,ARHGAP24突变导致足细胞中产生过量的Rac1信号传导,而ARHGDIA的突变导致Rho负调控因子RhoGDIα功能丧失,导致Rho-GTPases被过度激活以及细胞运动功能受损。
ADPKD是最常见的遗传性肾脏疾病,也是导致终末期肾脏疾病的主要因素之一。ADPKD的临床表现包括肾脏增大、肾内囊肿增生、高血压和各种肾外并发症16-17。据统计,超过90%的ADPKD病例归因于两个基因的突变——PKD1和PKD218。与ADPKD相关的细胞表型非常复杂,包括增殖、凋亡、细胞-细胞和细胞-基质粘附等方面的变化19。研究人员最新发现PKD1的基因突变会诱发肌动蛋白细胞骨架动力学的重大改变,该研究发现,在一种特殊的 Rho GTPase 激活蛋白(ARHGAP35)的促进下,中心体 RhoA 信号分区失调,导致 PKD1 突变的细胞中 Rho 激酶(ROCK)的激活增强;反过来,F-肌动蛋白聚合和收缩力也随之增加 20。此外,涉及Rho鸟嘌呤核苷酸交换因子(GEF) LARG、RhoA及其效应器ROCK、肌球蛋白轻链(MLC)的重要信号通路被确定为PKD1 在 ADPKD 中起作用的关键机制21。
Alport综合征是一种罕见的遗传性肾小球肾炎,伴有进行性肾功能丧失、听力减退和眼部异常 22。Rho GTPases与Alport综合征发病之间的机理联系已被证实, Rac1和Cdc42的激活会触发肾小球毛细血管襻内系膜丝状结节入侵23。最近,通过Rac1/Cdc42鸟嘌呤核苷酸交换因子β1Pix的参与,进一步发现了该综合征与Rac1和Cdc42之间的间接关系24。根据这项研究,β1Pix在调节受到Alport综合征影响的肾细胞中LDL受体的稳定性和功能方面发挥作用,并对其发病机制产生影响。
3. 总结
高效的肾脏屏障功能需要对足细胞的细胞骨架进行动态调节。Rho GTPases作为肌动蛋白细胞骨架动力学的主要调节因子,对维持肾脏屏障的持续性功能至关重要,这些蛋白在先天性肾病如FSGS、ADPKD和Alport综合征中起关键的调控作用。
有研究表明,Rho GTPases与艾滋病毒相关性肾病(一种以塌陷局灶节段性肾小球硬化症cFSGS为特征的疾病)有关,HIV-1辅助和决定蛋白Nef通过抑制RhoA活性和激活Rac1来影响足细胞形态25。此外,HIV-1转录因子Tat与FGF-2结合,通过刺激RhoA/phospho-Myosin轻链双通路,诱导了足细胞的分化和增殖26-27。进一步的研究发现了与Nef相互作用的宿主蛋白,其中包括与 Cdc42 活性密切相关的 TNK2(又称 ACK)28。综上所述,Rho GTPases是肌动蛋白细胞骨架的主要调节因子,它们的失调与肾小球疾病的发病机制有关,然而考虑到与Rho GTPases 相关的生物功能多种多样,当务之急是彻底研究潜在的治疗靶点,同时确定信号通路,以最大限度地减少 "脱靶 "效应。
品牌介绍:
细胞骨架和小G蛋白研究专家——Cytoskeleton
Cytoskeleton成立于 1993 年,在过去的30年里,公司专注于生产纯化蛋白质和易于使用的试剂盒来研究生化和细胞过程,提供了多种用于药物筛选、信号转导、蛋白质转录后修饰(PTM)、细胞骨架研究相关的系列试剂盒和产品。作为细胞骨架和小G蛋白研究专家,Cytoskeleton提供的全面解决方案既适用于小型科研项目所需的精细化实验设计,也能满足从小规模初步筛选到高通量大规模系统性研究的各种需求。其中,备受赞誉的专业级Pulldown和G-LISA活性检测试剂盒已广泛应用于诸多科研前沿阵地,成功赋能全球科研工作者实现高质量研究成果的产出。优宁维为Cytoskeleton全国一级代理商,欢迎询价。
Cytoskeleton热卖产品线
1. 小G蛋白活性检测盒:小G蛋白的活性测定有两种方法:pull-down和G-LISA。其中,G-LISA试剂盒具有高灵敏度、高精确度、简单操作、3小时内出结果、灵活可拆卸、需要样本量很少的特点。
2. 骨架蛋白生化试剂盒:包括G-actin/F-actin体内测定生化试剂盒、肌动蛋白聚合测定生化试剂盒、微管蛋白聚合测定试剂盒、微管蛋白体内测定生化试剂盒等,具有高灵敏度、高效、高通量且性价比高等优点。
3. 骨架蛋白: 提供纯化的微管蛋白(Microtubules)、肌动蛋白(Actin)、微管结合蛋白(MAPs)和马达蛋白(Motors)等,均是高度纯化的并且具有高生物活性。
4. 鬼笔环肽:最常见的细胞骨架染色剂是鬼笔环肽偶联物(phalloidins),Cytodskeleton提供的Actin-stain系列的鬼笔环肽荧光探针是非离子型的,更有助于获得理想的低背景结果。
5. 活细胞分析/亚细胞结构染色:提供了一系列检测活细胞中各种细胞结构的染料,包括SIR/SIR700/SPY、MemGlow等系列探针。
6. 小G蛋白抑制/促进剂:G-switch™系列抑制/促进剂是针对内源性Rho家族蛋白和途径的高效试剂。与依赖于靶蛋白过表达或敲低的方相比,G-switch™试剂可快速作用于内源性靶蛋白(在几分钟到几小时内)。
Cytoskeleton爆品推荐
产品名称 | 货号 | 规格 | 应用 |
RhoA Pulldown Activation Assay Kit | BK036 | KIT80assays | 小G蛋白Pulldown活性检测盒 |
Ras G-LISA Activation Assay Kit | BK131 | KIT96assays | 小G蛋白G-LISA活性检测盒 |
G-Actin : F-Actin In Vivo Assay Kit | BK037 | KIT30-100assays | 骨架蛋白生化试剂盒 |
Tubulin Polymerization Assay | BK011P | KIT96assays | 骨架蛋白生化试剂盒 |
Microtubules | MT002-A | 4x500ug | 纯化的微管蛋白,纯度>99%,批间差<5% |
Rhodamine Phalloidin | PHDR1 | 1x500ul | 鬼笔环肽 |
SiR-Tubulin Kit | CY-SC002 | 50-300slides | 活细胞分析/亚细胞结构染色 |
SiR-Actin Kit | CY-SC001 | 50-300slides | 活细胞分析/亚细胞结构染色 |
Rho Activator | CN01-A | 5x10units | 小G蛋白促进剂 |
Cell Permeable Rho Inhibitor | CT04-A | 1x20ug | 小G蛋白抑制剂 |
参考文献:
1. Liang, H. et al. Pharmacological inhibition of Rac1 exerts a protective role in ischemia/reperfusion-induced renal fibrosis. Biochem. Biophys. Res. Commun. 503, 2517–2523 (2018).
2. Blaine, J. & Dylewski, J. Regulation of the Actin Cytoskeleton in Podocytes. Cells 9, (2020).
3. Kravets, I. & Mallipattu, S. K. The Role of Podocytes and Podocyte-Associated Biomarkers in Diagnosis and Treatment of Diabetic Kidney Disease. J. Endocr. Soc. 4, (2020).
4. Lin, J. S. & Susztak, K. Podocytes: the Weakest Link in Diabetic Kidney Disease? Curr. Diab. Rep. 16, 45 (2016).
5. Kawanami, D., Matoba, K. & Utsunomiya, K. Signaling pathways in diabetic nephropathy. Histol. Histopathol. 31, 1059–67 (2016).
6. Huang, Q.-Y. et al. Cdc42: A Novel Regulator of Insulin Secretion and Diabetes-Associated Diseases. Int. J. Mol. Sci. 20, (2019).
7. Lin, C.-L. et al. Superoxide destabilization of beta-catenin augments apoptosis of high-glucose-stressed mesangial cells. Endocrinology 149, 2934–42 (2008).
8. Tung, C., Hsu, Y., Shih, Y., Chang, P. & Lin, C. Glomerular mesangial cell and podocyte injuries in diabetic nephropathy. Nephrology 23, 32–37 (2018).
9. Sambharia, M., Rastogi, P. & Thomas, C. P. Monogenic focal segmental glomerulosclerosis: A conceptual framework for identification and management of a heterogeneous disease. Am. J. Med. Genet. Part C Semin. Med. Genet. 190, 377–398 (2022).
10. Cameron, J. S. Focal segmental glomerulosclerosis in adults. Nephrol. Dial. Transplant. 18, vi45–vi51 (2003).
11. Akilesh, S. et al. Arhgap24 inactivates Rac1 in mouse podocytes, and a mutant form is associated with familial focal segmental glomerulosclerosis. J. Clin. Invest. 121, 4127–4137 (2011).
12. Daehn, I. S. & Duffield, J. S. The glomerular filtration barrier: a structural target for novel kidney therapies. Nat. Rev. Drug Discov. 20, 770–788 (2021).
13. Najafi, M. et al. High detection rate for disease-causing variants in a cohort of 30 Iranian pediatric steroid resistant nephrotic syndrome cases. Front. Pediatr. 10, (2022).
14. Gee, H. Y. et al. ARHGDIA mutations cause nephrotic syndrome via defective RHO GTPase signaling. J. Clin. Invest. 123, 3243–53 (2013).
15. Ashraf, S. et al. Mutations in six nephrosis genes delineate a pathogenic pathway amenable to treatment. Nat. Commun. 9, 1960 (2018).
16. Cornec-Le Gall, E., Alam, A. & Perrone, R. D. Autosomal dominant polycystic kidney disease. Lancet 393, 919–935 (2019).
17. Ong, A. C. M., Devuyst, O., Knebelmann, B., Walz, G. & ERA-EDTA Working Group for Inherited Kidney Diseases. Autosomal dominant polycystic kidney disease: the changing face of clinical management. Lancet (London, England) 385, 1993–2002 (2015).
18. Ong, A. C. M. Making sense of polycystic kidney disease. Lancet (London, England) 389, 1780–1782 (2017).
19. Ong, A. C. M. & Harris, P. C. A polycystin-centric view of cyst formation and disease: the polycystins revisited. Kidney Int. 88, 699–710 (2015).
20. Streets, A. J., Prosseda, P. P. & Ong, A. C. M. Polycystin-1 regulates ARHGAP35-dependent centrosomal RhoA activation and ROCK signaling. JCI Insight 5, (2020).
21. Cai, J. et al. A RhoA-YAP-c-Myc signaling axis promotes the development of polycystic kidney disease. Genes Dev. 32, 781–793 (2018).
22. Mahrous, N. N. et al. A Current Landscape on Alport Syndrome Cases: Characterization, Therapy and Management Perspectives. Biomedicines 11, 2762 (2023).
23. Zallocchi, M., Johnson, B. M., Meehan, D. T., Delimont, D. & Cosgrove, D. α1β1 integrin/Rac1-dependent mesangial invasion of glomerular capillaries in Alport syndrome. Am. J. Pathol. 183, 1269–1280 (2013).
24. Chahdi, A. et al. βPix sequesters IDOL and prevents LDL receptor degradation through a β2AR-regulated signaling pathway in Alport Syndrome. Prepr. from bioRxiv (2020). doi:10.1101/2020.11.06.372292
25. Chen, A., Yin, L., Lee, K. & He, J. C. Similarities and Differences between COVID-19-Associated Nephropathy and HIV-Associated Nephropathy. Kidney Dis. 8, 1–12 (2022).
26. Matsuda, J., Asano-Matsuda, K., Kitzler, T. M. & Takano, T. Rho GTPase regulatory proteins in podocytes. Kidney Int. 99, 336–345 (2021).
27. Lu, T. et al. HIV-1 Nef Disrupts the Podocyte Actin Cytoskeleton by Interacting with Diaphanous Interacting Protein. J. Biol. Chem. 283, 8173–8182 (2008).
28. Kim, J.-A., Shin, Y.-H. & Yoon, C.-H. The HIV-1 Virulence Factor Nef as a New Therapeutic Target Against HIV/AIDS. J. Bacteriol. Virol. 50, 187–194 (2020).