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红细胞裂解液原理与使用指南

时间:2025-04-02 10:04:36
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红细胞裂解液

一、红细胞裂解液简介

红细胞裂解液(Red Blood Cell Lysis Buffer,亦称 ACK Lysis Buffer)是一种高效、简便的红细胞去除试剂。它通过特异性裂解红细胞,实现对有核细胞的富集,同时不损伤有核细胞,确保细胞活性与完整性。这一方法广泛应用于经酶消化分散的组织细胞分离纯化、淋巴细胞分离纯化,以及组织细胞蛋白与核酸提取等实验中红细胞的去除。经裂解处理后的组织细胞中无红细胞残留,可直接用于原代培养、细胞融合、流式细胞分析、核酸与蛋白的分离和提取等后续实验。

二、保存条件

红细胞裂解液应在 2-8℃的低温环境下保存,以维持其稳定性和有效性,确保实验结果的可靠性。

三、配方

以下是 ACK 裂解液的详细配方,适用于 1000 mL 的配制:
  • NH4Cl:8.02 g,最终浓度为 150 mmol/L
  • KHCO3:1 g,最终浓度为 10 mmol/L
  • Na2EDTA:37.2 mg,最终浓度为 0.1 mmol/L
配制步骤如下:
  1. 将上述试剂依次溶解于 850 mL 去离子水中。
  2. 使用 pH 计检测溶液 pH 值,调整至 7.2-7.4,确保溶液呈中性,避免对细胞造成损伤。
  3. 最后,加去离子水定容至 1000 mL,充分搅拌均匀。
  4. 配制好的裂解液可在室温下保存长达 6 个月,但建议在使用前摇匀,以确保成分均匀分布。

ACK lysis buffer

Reagent
Quantity (for 1000 mL)
Final concentration
NH4Cl
 8.02 g
150 mm
KHCO3
   1 g
10 mm
Na2EDTA
37.2 mg
0.1 mm

四、使用说明

(一)组织细胞样品处理

  1. 细胞消化与离心:将新鲜组织经胰酶或胶原酶等消化分散成单个细胞悬液,然后进行离心,弃去上清液,收集细胞沉淀。
  2. 裂解液加入与混匀:从 4℃冰箱中取出预冷的裂解液,按 1:3-5 的比例向细胞沉淀中加入裂解液(1 mL 细胞压积加入 3-5 mL 裂解液),轻轻吹打混匀,使裂解液与细胞充分接触,确保红细胞裂解完全。
  3. 离心去除裂解液:以 800-1000 rpm 的速度离心 5-8 分钟,离心后弃去上层红色清液,此时红细胞已被裂解并去除。
  4. 细胞洗涤:收集沉淀部分,加入适量的 Hank’s 液或无血清培养液,再次离心洗涤 2-3 次,以彻底去除残留的裂解液和红细胞碎片。
  5. 裂解不完全处理:如果裂解不完全,可重复步骤 2 和 3,直至红细胞完全去除。
  6. 细胞重悬与后续实验:将细胞重悬于适当的溶液中,用于后续实验。如果需要提取 RNA,建议从步骤 4 开始使用 DEPC 水配制的溶液进行操作,以避免 RNA 降解。

(二)血细胞处理

  1. 抗凝血离心:取新鲜抗凝血,进行离心,弃去上清液,收集细胞沉淀。
  2. 裂解液加入与混匀:从 4℃冰箱中取出预冷的裂解液,按 1:6-10 的比例向细胞沉淀中加入裂解液(1 mL 细胞压积加入 6-10 mL 裂解液),轻轻吹打混匀,使裂解液与细胞充分接触,确保红细胞裂解完全。
  3. 离心去除裂解液:以 800-1000 rpm 的速度离心 5-8 分钟,离心后弃去上层红色清液,此时红细胞已被裂解并去除。
  4. 细胞洗涤:收集沉淀部分,加入适量的 Hank’s 液或无血清培养液,再次离心洗涤 2-3 次,以彻底去除残留的裂解液和红细胞碎片。
  5. 裂解不完全处理:如果裂解不完全,可重复步骤 2 和 3,直至红细胞完全去除。
  6. 细胞重悬与后续实验:将细胞重悬于适当的溶液中,用于后续实验。如果需要提取 RNA,建议从步骤 4 开始使用 DEPC 水配制的溶液进行操作,以避免 RNA 降解。

五、作用原理

红细胞裂解液的核心成分是氯化铵。在裂解过程中,氨根离子(NH4⁺)无法通过细胞膜,而其他离子(如氯离子 Cl⁻)可以自由通过。这种选择性通透性导致细胞内外离子浓度差异,形成渗透压差。外部的水分会因渗透压差扩散至细胞内,使红细胞膨胀直至破裂,从而实现裂解效果。而有核细胞由于细胞膜结构和成分的差异,对裂解液的耐受性更强,不会受到损伤,从而实现红细胞与有核细胞的有效分离。

 

名称 货号 规格
红细胞裂解液(1×) abs9101-500ml 500ml
红细胞裂解液(10×) abs9241-100ml 100ml
血液DNA提取试剂盒(磁珠法) abs60566-50T 50T
小量血液DNA提取试剂盒 abs60279-50T 50T