一、组织的组成
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组织解离的方法
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参考文献:Best Practices for Preparing a Single Cell Suspension from Solid Tissues for Flow Cytometry doi:10.1002/cyto.a.23690.二、什么是高质量的样本制备?
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参考文献:《流式细胞仪配套用检测试剂注册技术审查指导原则》哪些因素会影响细胞数量?
1、不同消化方案得到不同细胞数量
方法1.Collagenase D and Dispase Tissue Digestion
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方法2:Collagenase D and Collagenase P Tissue Digestion
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2、离心速度
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a)选择RCF而非RPM
b)使用聚丙烯管(减少细胞黏附)
c)用宽口的枪头
d)均匀的速度
e)避免产生气泡
3、离心幅度
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√ 提篮式离心机(适当降低降速幅度),可以减少细胞的丢失(离心后细胞沉淀聚集在离心管底部),降速时不易破坏细胞沉淀
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√ 固定角度的离心机会在降速时破坏细胞沉淀,造成细胞丢失(但优点是细胞沉淀固定在一角,方便吸取更多的上清)
细胞量预估
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哪些因素会影响细胞活性?
1、冻存组织与新鲜组织有多大差别?
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参考文献:Best Practices for Preparing a Single Cell Suspension from Solid Tissues for Flow Cytometrydoi:10.1002/cyto.a.23690.2、酶的选择问题
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四种不同的消化酶处理小鼠黑色瘤组织样本:Single cell suspensions of melanomas were prepared using distinct enzymatic treatments and cell viabilities were determined by flow cytometric analysis. 得到的细胞数量和活性有较大差异
3、敏感的抗原会上演消失术
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为什么要加入DNASE酶?
l 组织消化时,机械剪切或酶解会导致细胞破裂,释放基因组 DNA。DNA 分子的粘性会使溶液变得粘稠,阻碍单细胞分离。
l 游离 DNA 可通过静电作用桥接细胞,形成细胞团块。DNASE 破坏这种桥接作用,减少团聚,提高单细胞得率。
l 浓度:通常使用10-100 µg/mL的DNase I
l 时间:消化过程中加入,作用10-30分钟
l 终止:可通过EDTA或加热灭活DNase酶
三、质控是必须要做的
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