组织解离看路书，新手操作不迷路

组织解离是流式检测、磁珠分选、细胞培养的核心第一步，操作规范直接决定细胞活率、纯度与实验成败。

您已驶入组织解离实验专属路线，本路书为您全程智能领航～

途经五大站点：试剂准备→样本预处理→解离消化→percoll密度梯度分离→流式鉴定，全流程精准踩点、标清操作规范，实验新手也能一路畅通不迷路，稳稳抵达高活率单细胞悬液的终点！

常见小鼠组织样本类型

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一、实验前准备

全套试剂耗材

组织样本处理-所用全套试剂耗材

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二、样本取材

预处理

1、样本取材

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2、组织解离前预处理-结肠

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· 取出整段结肠，置于预冷的 无Ca²⁺、Mg²⁺的PBS（PBS） 中

· 清除肠管外的脂肪组织和肠系膜

· 沿肠系膜侧纵向剪开结肠，在PBS中轻柔漂洗，直至粪便完全洗净

· 将结肠横向剪成约 0.5-1.0 cm 的小片段后，进行后续消化处理

3、组织解离前预处理-肺脏

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· 迅速取出完整肺脏

· 清洗修剪：立即置于预冷的组织保存液 或PBS中，仔细去除气管、主支气管及肺门周围的脂肪和结缔组织。

· 机械解离，用锋利的眼科剪将其剪碎成 0.5-1 mm³ 的小块

 

三、标准化组织解离

解离+percoll分离+流式鉴定

以小鼠肺脏样本为例，实验思路框架

实验所用试剂耗材

 

1、组织消化解离

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(1) 酶消化：将组织块（约100-200mg）转移至离心管，加入 1 mL 组织解离液（难消化可延长）。

(2) 摇床孵育：将离心管置于 37℃恒温水平摇床，以 80-100 rpm 的转速孵育 30-40分钟。

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(3) 70μm 细胞筛网过滤，预冷 1×PBS 3-5mL 冲洗筛网；

(4) 4℃、300g 离心 5min，弃上清，4mL 40% Percoll 重悬沉淀；

2、percoll密度梯度液配置（40%、80%、100%）

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· 100% Percoll溶液：

Percoll细胞分离液与PBS缓冲液(10×)按体积比9:1混合，配制等渗100% Percoll母液

· 40% Percoll溶液：

用100% Percoll母液和RPMI 1640/1×PBS按体积比4:6混合，配制40%等渗Percoll溶液。

· 80%Percoll溶液：

用100% Percoll母液和RPMI 1640/1×PBS按体积比8:2混合，配制80%等渗Percoll溶液。

3、Percoll 密度梯度提取目的细胞

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(1) 建立密度梯度：用4mL 40% Percoll溶液重悬细胞沉淀。在另一15mL离心管底部预先加入2.5mL 80% Percoll溶液。然后，极其缓慢地 将40% Percoll细胞悬液沿管壁加在80% Percoll液面上，形成清晰界面。

(2) 离心：在 20℃、800×g （升速 1、降速 0）条件下离心 20分钟

(3) 收集目标细胞：离心后，管中液体将分层。目标淋巴细胞和髓系细胞会集中在 40%与80% Percoll溶液的界面处，形成一层白色的云雾状细胞层。小心地用吸管将该层细胞吸出，转移至新管中。

(4) 加预冷 1×PBS，4℃、300g 离心 5min，弃上清；

(5) 细胞染色缓冲液重悬沉淀，备用。

4、细胞计数，活率测定&磁珠分选结果

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· 取10-20μL细胞悬液，与等体积的 台盼蓝染液（0.4%） 混合

· 取适量混合液（通常10μL）加入计数仪专用的一次性计数载玻片

· 将载玻片插入仪器，自动分析细胞总浓度（cells/mL）、活细胞浓度和活率百分比

5、磁珠分选结果展示

未分选前，小鼠 CD11b

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分选后，小鼠CD11b(S0K0012,用量5μl)

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未分选前，小鼠 CD8

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分选后，小鼠CD8(S0K0005,用量2.5μl)

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小优有妙计

组织样本如何延长保存时间？

将盛有PBS或培养基的容器放冰上，采集的新鲜组织样本直接放在里面短暂转移处理；如需延长组织的保存时间可以用组织保存液abs9474-100mL（爱必信），4℃可保存48小时。

什么情况下需要对组织样本进行纯化和预富集？

组织样本包括免疫组织和非免疫组织。其中，免疫组织：胸腺、脾脏、淋巴结等，免疫细胞占比高；非免疫组织：肿瘤、肝脏、肺脏、肠等，免疫细胞占比低。

当目标细胞在原始样本中占比过低，或存在大量干扰物质时，建议进行预富集，所以非免疫脏器最好过percoll，这是确保下游流式分析或分选实验成功可靠的关键。

 

常见组织解离试剂盒及结果展示

 

abs9482，组织解离液；流式-眼睛样本

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abs50090，大鼠/小鼠肿瘤组织解离试剂盒

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abs50098，小鼠脑组织解离试剂盒

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