Mo-DC可以通过各种手动或者自动的操作步骤获取。在这里我们以6孔板为例进行说明
实验步骤
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第0天:单核细胞的体外培养
a:计数3×106个单核细胞并添加3mL完全培养基(RPMI 1640、2 mM L-谷氨酰胺,1%自体血清)体外培养,同时补充7.8250 IU / mL IL-4和800 IU / mL GM-CSF。
b:将接种的细胞放在37°C、5%CO2的培养箱中孵育2天。
第2天:刺激
将细胞重悬于1.5 mL完全培养基中,再补充2倍浓度的IL-4和GM-CSF刺激,然后放回培养箱中孵育。
第6天:刺激
a: 再次去除细胞中的培养基。
b: 将细胞重悬于1.5 mL的培养基中,并添加 2000 IU / mL IL-6、400 IU / mLIL-1β,2000 IU / mL TNF-α和2μg/ mL PGE 2进行刺激。
c: 将重悬的细胞放回培养箱再培养24小时。
第7天:Mo-DC评估
a: 再次去除细胞中的培养基。
b: 将细胞重悬于1.5 mL的培养基中,并添加 2000 IU / mL IL-6、400 IU / mLIL-1β,2000 IU / mL TNF-α和2μg/ mL PGE 2进行刺激。
c: 将重悬的细胞放回培养箱再培养24小时
d:利用流式细胞仪中的物理光信号和PI的荧光评估成熟Mo-DC(mMo-DC)的活力,得率和细胞比例。
圈门逻辑
图注:Mo-DC的产生
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图中显示了使用6孔板实验方案(n = 18)诱导产生的mMo-DC活性和得率(即相对于初始单核细胞计数而言的mMo-DC计数)。利用MACSQuant®Analyzer 10流式细胞仪按照圈门逻辑获得数据:根据物理散射光圈中目的细胞。随后通过PI荧光将死细胞排除并评估mMo-DC的活力为95.4±2.4%。基于刚开始接种的单核细胞数量计算的得到mMo-DCs的得率为23%。